Créditos ECTS Créditos ECTS: 6
Horas ECTS Criterios/Memorias Trabajo del Alumno/a ECTS: 99 Horas de Tutorías: 3 Clase Expositiva: 24 Clase Interactiva: 24 Total: 150
Lenguas de uso Castellano, Gallego
Tipo: Materia Ordinaria Grado RD 1393/2007 - 822/2021
Departamentos: Microbiología y Parasitología
Áreas: Microbiología, Parasitología
Centro Facultad de Farmacia
Convocatoria: Segundo semestre
Docencia: Con docencia
Matrícula: Matriculable
La materia Análisis Microbiológico y Parasitológico incluye contenidos mínimos de formación, adquisición de competencias y habilidades que el alumno debe conocer respecto a la toma, transporte y procesamiento de muestras para el diagnóstico de enfermedades infecciosas y para la detección y/o identificación de microorganismos patógenos para el ser humano y animales o que suponen un riesgo ambiental y alimentario.
• TEMA 1. El laboratorio de análisis clínico. Organización y procedimientos generales. Bioseguridad: categorías de riesgo biológico y niveles de contención. Normas de seguridad e higiene. Conceptos generales sobre la recogida, transporte, almacenamiento y manipulación de material biológico. Eliminación de residuos infecciosos. Control de Calidad: métodos y áreas de control.
• TEMA 2. Técnicas de diagnóstico bacteriológico. Examen de muestras en fresco y teñidas. Aislamiento y cultivo de bacterias. Métodos microbiológicos convencionales para la identificación bacteriana. Sistemas de identificación comerciales. Sistemas automatizados.
• TEMA 3. Técnicas de diagnóstico micológico. Examen de muestras en fresco y teñidas. Aislamiento y cultivo de hongos. Métodos microbiológicos convencionales para la identificación de hongos. Sistemas de identificación comerciales.
• TEMA 4. Técnicas de diagnóstico virológico. Detección directa. Citología e histología. Microscopía electrónica. Aislamiento viral. Caracterización de los virus. Efecto citopático. Cuerpos de inclusión. Hemaglutinación viral. Determinación de la dosis infecciosa en cultivo de tejidos. Ensayos de placas y de transformación.
• TEMA 5. Diagnóstico inmunológico de las enfermedades infecciosas. Detección de antígenos en muestras clínicas. Técnicas inmunológicas para la identificación de microorganismos. Serodiagnóstico de las enfermedades infecciosas. Objetivos, métodos e interpretación de las pruebas serológicas.
• TEMA 6. Técnicas moleculares aplicadas al diagnóstico microbiológico. Análisis cromatográfico de ácidos grasos. Electroforesis de proteínas. Secuenciación de ácidos nucleicos. Hibridación de los ácidos nucleicos. Amplificación de ácidos nucleicos mediante la reacción en cadena de la polimerasa.
• TEMA 7. Obtención y procesado de muestras de alimentos y aguas para análisis microbiológico. Muestras de alimentos. Recuento de mesófilos totales. Indicadores de falta de higiene. Investigación de patógenos. Análisis de manipuladores. Muestras de agua. Recuento de aerobios mesófilos. Indicadores de contaminación fecal. Sistemas rápidos de detección de indicadores y patógenos.
• TEMA 8. Obtención y procesado de muestras ambientales para análisis microbiológico. Estrategias de muestreo ambiental. Análisis de muestras de aire: sedimentación y filtración. Análisis de superficies por placas de contacto, lengüetas y método del hisopo.
• TEMA 9. Diagnóstico de las infecciones de piel, tejidos blandos y heridas. Obtención, transporte y conservación de las muestras. Protocolo de estudio microbiológico e interpretación de los resultados.
• TEMA 10. Diagnóstico de las infecciones de ojos y oídos. Estudio microbiológico de exudados conjuntival y ótico. Obtención de muestras. Examen directo de muestras teñidas. Técnicas inmunológicas. Protocolo de estudio microbiológico e interpretación de los resultados.
• TEMA 11. Diagnóstico de las infecciones urinarias. Obtención, transporte y conservación de las muestras. Examen microscópico de muestras de sedimento en fresco y teñidas. Pruebas indirectas. Urocultivo. Protocolo de estudio microbiológico e interpretación de los resultados. La orina en la detección de antígenos.
• TEMA 12. Diagnóstico de infecciones gastrointestinales. Obtención, transporte y conservación de las muestras. Examen de muestras de heces en fresco y teñidas. Coprocultivo. Protocolo de estudio microbiológico e interpretación de los resultados. Técnicas de detección de antígenos.
• TEMA 13. Diagnóstico de las infecciones respiratorias. Obtención, transporte y procesado de muestras de exudado nasofaríngeo y de esputo. Examen microscópico de muestras teñidas. Protocolo de estudio microbiológico e interpretación de los resultados. Detección de antígenos y diagnóstico serológico. Amplificación de ácidos nucleicos.
• TEMA 14. Estudio microbiológico de exudados uretrales y vaginales. Obtención de las muestras. Examen microscópico de muestras teñidas. Protocolo de estudio microbiológico e interpretación de los resultados.
• TEMA 15. Estudio microbiológico de líquido cefalorraquídeo y sangre. Obtención de las muestras. Examen microscópico de muestras teñidas. Protocolo de estudio microbiológico e interpretación de los resultados.
• TEMA 16. Análisis de la sensibilidad a agentes antimicrobianos. Sensibilidad a agentes antibacterianos y antifúngicos. Métodos de difusión y dilución. Sistemas comerciales. Métodos alternativos para la detección de resistencias. Sensibilidad a agentes antivirales: ensayo de reducción de placas. Detección de agentes antimicrobianos en fluidos biológicos y tejidos.
• TEMA 17. El diagnóstico en Parasitología. Importancia de la historia clínica en el análisis parasitológico.
• TEMA 18. Coprología parasitaria I. Formas parasitarias presentes en heces. Procedimientos de obtención y conservación de las muestras. Examen macroscópico. Examen microscópico. Técnicas de concentración. Técnicas cuantitativas. Tinciones. Elementos no parasitarios de las heces. Interpretación de resultados.
• TEMA 19. Coprología parasitaria II. Métodos de concentración de larvas en heces. Coprocultivo de helmintos y protozoos. Métodos específicos para el diagnóstico de la enterobiosis.
• TEMA 20. Coprología parasitaria III. Aplicación de métodos inmunológicos y moleculares.
• TEMA 21. Examen parasitológico de muestras del tracto genitourinario: orina, exudado vaginal/uretral, secreción prostática. Diagnóstico de laboratorio de la trichomonosis. Diagnóstico de laboratorio de la schistosomosis vesical.
• TEMA 22. Hematología parasitaria I. Formas parasitarias presentes en sangre. Obtención de muestras. Examen en fresco. Examen de preparaciones teñidas: frotis fino y gota gruesa. Examen de sangre y métodos alternativos en el diagnóstico de parasitosis hemotisulares: malaria, filariosis, trypanosomosis y leishmaniosis.
• TEMA 23. Hematología parasitaria II. Aplicación de métodos inmunológicos y moleculares. Metodología en el diagnóstico de toxoplasmosis, cisticercosis, hidatidosis y trichinellosis. Interpretación de resultados.
• TEMA 24. Parásitos presentes en otras muestras biológicas. Examen de esputo. Examen de aspirados: bronquial, duodenal y hepático. Examen de líquido cefalorraquídeo, líquido ganglionar, médula ósea, piel y otros tejidos.
• TEMA 25. Parásitos presentes en muestras de agua, alimentos, y ambientales. Métodos de concentración e identificación.
Programa de clases prácticas:
MICROBIOLOGÍA:
Práctica 1. Análisis microbiológico de orina. Examen de sedimento y Tinción GRAM. Urocultivo cuantitativo y cualitativo. Identificación mediante métodos convencionales y sistemas comerciales.
Práctica 2. Análisis microbiológico de exudados ótico y vaginal. Identificación de formas fúngicas: examen de muestras en fresco y teñidas. Identificación mediante métodos convencionales.
Práctica 3.- Análisis microbiológico del aire y de superficies. Valoración de la eficacia de agentes químicos para la desinfección de superficies.
Practica 4.- Identificación de microorganismos mediante amplificación del ácido nucleico por la reacción en cadena de la polimerasa (PCR).
Práctica 5.- Estudio de la sensibilidad a antimicrobianos. Métodos de dilución y difusión. Determinación de la concentración mínima inhibitoria y microbicida.
PARASITOLOGÍA:
Práctica 1. Coprología parasitaria: Examen macroscópico. Técnicas de examen directo. Técnicas coprológicas de concentración. Identificación de formas parasitarias al microscopio. Técnica de Graham para el diagnóstico de la enterobiosis. Método de Baerman para el aislamiento de larvas de nematodos.
Práctica 2. Hematología parasitaria: Identificación microscópica de formas parasitarias en preparaciones teñidas de sangre. Identificación microscópica de formas parasitarias tisulares. . Dete rminación de formas parasitarias en muestras ambientales.
Básica
• Forbes, B.A., Sahm, D. F., Weissfeld, A. S. Diagnóstico Microbiológico (Bailey & Scott), 12a Ed., Editorial Médica Panamericana, 2009.
• Gillespie, S.H. Hawkey, P.M. 1995. Medical Parasitology: a práctical aproach. Ed. Oxford University Press, USA, 1º Ed., 1995.
. Riedel S. Morse, S. A., Miettzner,T.A. Miller, S. Jawetz Microbiología médica. McGraw Hill Lange. (28th edition). 2020.
Complementaria
• AAPF (American Academy of Family Physicians). Atlas de Microscopía Clínica. 4ª Ed. Editorial Médica Panamericana.2015.
• Alvarez, M.V., E. Boquet, I. De Fez. Manual de técnicas en Microbiología Clínica. 2ª Ed. AEFA, 1990.
• Gamazo, C., I. López-Goñi y R. Díaz. Manual práctico de Microbiología. 3ª Ed. Masson, 2005.
• García, S. Lynne. Diagnostic medical parasitology. ASM Press, Washington, D.C. 6ªEd. 2016
• http://dpd.cdc.gov/dpdx/Default.htm. DPDx Laboratory identification of parasites of public health concern.
• https://www.seimc.org/documentos-cientificos/procedimientos-microbiolog…
• Murray, Patrick R., Ellen Jo Baron, James H. Jorgensen, Marie Louise Landry, and Michael A. Pfaller. Manual of Clinical Microbiology, 9º Ed. Washington, DC: ASM Press, 2007.
• OMS. Métodos básicos en el laboratorio en Parasitología Médica, 1992.
• Prats, G. 2012. Microbiología y Parasitología Médicas. Madrid: Editorial Médica Panamericana..
• Prats, G. Microbiología Clínica y Parasitología Médicas. Ed. Panamericana, 2013.
• Shors, Teri . Virus. Estudio molecular con orientación clínica. Ed. Médica Panamericana, 2009.
Conocimientos:
- Con 03. Saber aplicar el método científico y adquirir habilidades en el manejo de la legislación, fuentes de información, bibliografía, elaboración de protocolos y demás aspectos que se consideran necesarios para el diseño y evaluación crítica de ensayos preclínicos y clínicos.
Módulo de Biología
- Con 22. Conocer la naturaleza y comportamiento de agentes infecciosos.
- Con 32. Conocer y comprender los fundamentos básicos de los análisis clínicos y las características y contenidos de los dictámenes del diagnóstico de laboratorio
- Con 39. Conocer las Técnicas analíticas relacionadas con diagnóstico de laboratorio, tóxicos, alimentos y medioambiente.
Habilidades o destrezas:
H/D02. Diseñar, aplicar y evaluar reactivos, métodos y técnicas analíticas clínicas, conociendo los fundamentos básicos de los análisis clínicos y las características y contenidos de los dictámenes de diagnóstico de laboratorio.
H/D 04. Desarrollar análisis higiénico-sanitarios (bioquímicos, bromatológicos, microbiológicos y parasitológicos, entre otros), especialmente los relacionados con la salud en general y con los alimentos y medioambiente en particular
Competencias:
- Comp 01. Capacidad de análisis y síntesis.
- Comp 02. Capacidad de organizar y planificar
- Comp 03. Comunicación oral y escrita en la propia lengua.
- Comp 10. Trabajo en equipo.
- Comp 17. Capacidad de aplicar los conocimientos en la práctica.
- Comp 27. Preocupación por la calidad.
La docencia constará de las siguientes actividades formativas:
• Clases expositivas: clases magistrales impartidas por el profesor con el apoyo de material informático diverso. El alumno dispondrá en el aula virtual de material complementario para el estudio y preparación de la asignatura.
• Clases prácticas de laboratorio: se incluyen las clases que se desarrollan en el laboratorio de prácticas. La realización de las prácticas es obligatoria e imprescindible para aprobar la asignatura y una vez finalizadas serán válidas en los dos cursos académicos siguientes al de su realización.
• Tutorías: Serán programados por el profesor a petición de los alumnos. Se proponen actividades como, aclaración de dudas sobre teoría, prácticas o lecturas.
Se evaluarán de forma independiente las dos partes de la materia, Análisis Microbiológico, que representará el 60% de la nota final, y Análisis Parasitológico, que supondrá el 40% de la nota final, según los siguientes criterios:
• Análisis Microbiológico: La evaluación se realizará sobre la base de una evaluación continua y una prueba final específica. La calificación del alumno para esta parte de la materia resultará de la valoración de los siguientes apartados:
1) Prueba final específica de caracter obligatorio (presencial) basada en preguntas objetivas y casos prácticos. En esta prueba también serán objeto de evaluación los conocimientos adquiridos en las clases prácticas de laboratorio: 75%
2) Evaluación continua: 3 cuestionarios a realizar a lo largo del curso de forma presencial en el aula o a través del aula virtual o la plataforma MS Teams: 25%
• Análisis Parasitológico: La evaluación de esta parte de la materia se realizará sobre la base de una prueba final específica (presencial) que constará de preguntas objetivas y casos prácticos. En esta prueba también serán objeto de evaluación los conocimientos adquiridos en las clases prácticas de laboratorio:100%
La valoración de las competencias y habilidades adquiridas se realizará:
En el examen: Con 22, Con32, Con 39, Comp 03
En el laboratorio. Con 03, Comp 01, Comp 02; Comp 10, Comp 17, Comp 27, H/D02, H/D04
Para superar la asignatura será necesario alcanzar una puntuación mínima del 50% en cada una de las partes de la prueba final específica. En caso de no alcanzar ese mínimo en alguna de las partes, la calificación que figurará en el acta será la de la parte no superada. Si se supera sólo una parte de la asignatura, la calificación obtenida en esa parte se conservará únicamente en el mismo curso académico.
Si el alumno/a no se presenta al examen final en ninguna de las dos oportunidades tendrá la calificación de “No presentado”.
El alumno/a no podrá aprobar la asignatura si no realiza las prácticas de laboratorio. En ese caso su nota final en la asignatura será “No Presentado”.
En el caso del alumnado que tengan dispensa de asistencia a clase, la evaluación se basará únicamente en el examen final y la realización de las clases prácticas (100% de la nota final).
En la 2ª oportunidad del curso académico se seguirán los mismos criterios de evaluación.
• Para los casos de realización fraudulenta de ejercicios o pruebas, se aplicará lo establecido en el Reglamento para la evaluación del desempeño académico de los estudiantes y la revisión de calificaciones.
• Estudio independiente, individual o grupal: 65 horas
• Realización de pruebas como parte de la evaluación continua: 1h
• Realización de prácticas: 24h
• Horas totales de trabajo personal del alumno: 90h
• Se recomienda llevar la materia al día para un mejor aprovechamiento de esta, la asistencia a las clases expositivas, una dedicación regular, no avanzar sin entender y conocer la materia anterior, utilizar la plataforma virtual como complemento, consultar la bibliografía, utilizar las horas de tutorías para resolver las dudas y leer el guion de prácticas antes de acudir a realizarlas.
Maria Isabel Santos Rodriguez
Coordinador/a- Departamento
- Microbiología y Parasitología
- Área
- Microbiología
- Teléfono
- 881816028
- Correo electrónico
- ysabel.santos [at] usc.es
- Categoría
- Profesor/a: Catedrático/a de Universidad
Maria Esperanza Paniagua Crespo
- Departamento
- Microbiología y Parasitología
- Área
- Parasitología
- Teléfono
- 881815004
- Correo electrónico
- mesperanza.paniagua [at] usc.es
- Categoría
- Profesor/a: Titular de Universidad
Maria Angeles Muñoz Crego
- Departamento
- Microbiología y Parasitología
- Área
- Microbiología
- Teléfono
- 881816909
- Correo electrónico
- a.munoz.crego [at] usc.es
- Categoría
- Profesor/a: Titular de Universidad
Noemi Bujan Gomez
- Departamento
- Microbiología y Parasitología
- Área
- Microbiología
- Teléfono
- 881816959
- Correo electrónico
- noemi.bujan [at] usc.es
- Categoría
- Posdoutoral Xunta
Javier Dubert Perez
- Departamento
- Microbiología y Parasitología
- Área
- Microbiología
- Correo electrónico
- javier.dubert [at] usc.es
- Categoría
- PROFESOR/A PERMANENTE LABORAL
Seila Couso Pérez
- Departamento
- Microbiología y Parasitología
- Área
- Parasitología
- Correo electrónico
- seila.couso.perez [at] usc.es
- Categoría
- Profesor/a: Ayudante Doutor LOSU
Sandra Martin Garcia
- Departamento
- Microbiología y Parasitología
- Área
- Parasitología
- Correo electrónico
- sandramartin.garcia [at] usc.es
- Categoría
- Predoctoral USC
| Martes | |||
|---|---|---|---|
| 09:00-10:00 | GrupoB /CLE_02 | Castellano | 5035 Aula 6 Facultad Derecho |
| 16:00-17:00 | GrupoA /CLE_01 | Castellano | 5035 Aula 6 Facultad Derecho |
| Miércoles | |||
| 09:00-10:00 | GrupoB /CLE_02 | Castellano | 5035 Aula 6 Facultad Derecho |
| 16:00-17:00 | GrupoA /CLE_01 | Castellano | 5035 Aula 6 Facultad Derecho |
| Jueves | |||
| 09:00-10:00 | GrupoB /CLE_02 | Castellano | 5035 Aula 6 Facultad Derecho |
| 16:00-17:00 | GrupoA /CLE_01 | Castellano | 5035 Aula 6 Facultad Derecho |